EXAMEN DES SELLES: PRÉLÈVEMENT, TECHNIQUES, EXEMPLES - MÉDICAMENT - 2025

L' examen des selles est une étude de laboratoire dans laquelle les selles (matières fécales) sont examinées afin de détecter les parasites intestinaux. C'est l'une des techniques de laboratoire les plus simples et les plus anciennes, initialement développée par Anton Van Leeuwenhoek au 18ème siècle.

Anton Van Leeuwenhoek, considéré comme le père de la microbiologie, a utilisé la méthode coproparasitoscopique "directe" pour observer ses propres excréments et a décrit ce qui, des années plus tard, a été identifié comme étant les trophozoïtes de Giardia lamblia, un protozoaire qui envahit l'intestin grêle de l'homme.

Forme adulte Ascaris lumbricoides (Source: Wikimedia Commons)

Les maladies parasitaires affectent des millions de personnes dans le monde, en particulier dans les pays pauvres ou sous-développés, où les conditions sanitaires sont médiocres liées à l'élimination des excréments et à la consommation d'eau contaminée.

Le diagnostic de ces maladies est important pour un traitement adéquat, l'examen coproparasitoscopique en étant un outil indispensable. C'est un test de laboratoire simple, rapide et peu coûteux.

L'examen des selles comprend plusieurs techniques qui, en plus de permettre la visualisation directe et la quantification des œufs, des trophozoïtes, des kystes ou des larves, permettent d'identifier les structures du microorganisme et ainsi d'identifier le parasite.

Les techniques utilisées pour l'examen coproparasitoscopique comprennent les techniques de coloration au bleu de méthylène, les méthodes de concentration, la technique Faust, Richie, les techniques de sédimentation et les examens directs, uniques ou en série.

Œuf non fécondé d'Ascaris lumbricoides. (Source: Centers for Disease Control and Prevention, via Wikimedia Commons).

Prise d'échantillon

Pour mener à bien cette étude, la patiente doit prélever un échantillon de selles fraîches qui n'est pas contaminé par l'urine, l'eau, le sang (menstruel) ou le sol. L'échantillon doit avoir la taille d'une noix ou, s'il est liquide, il doit avoir au moins le volume correspondant à deux cuillères à soupe.

Le patient ne doit pas avoir pris de médicaments parasiticides pendant au moins trois jours avant le prélèvement ou pendant la période indiquée par son médecin. Vous ne devez pas non plus utiliser de médicaments laxatifs.

Les échantillons doivent être placés dans un contenant sec à large couvercle ou dans un contenant jetable spécialement conçu (disponible dans votre pharmacie préférée). Les échantillons doivent être placés dans un environnement frais, ne doivent pas être réfrigérés plus de 24 heures et ne doivent pas être stockés à proximité de sources de chaleur ou congelés.

Lorsque l'examen indiqué est en série, au moins trois échantillons sont nécessaires, qui doivent être prélevés toutes les 24 heures ou plus, comme indiqué par le médecin. Pour ces cas, les laboratoires fournissent généralement un ensemble de flacons contenant des solutions avec des conservateurs.

Lorsque le patient observe un "ver" dans les selles, si possible, il doit le placer dans un flacon fermé avec de l'eau et l'amener au laboratoire avec le flacon de l'échantillon de selles.

Les flacons avec les échantillons ou avec les "vers" doivent être étiquetés et identifiés avec le nom du patient, son âge, son sexe et la date et l'heure du prélèvement.

Il est très important d'instruire adéquatement le patient sur tous ces aspects du prélèvement et de la manipulation des échantillons, car cela dépend de la viabilité des éléments pouvant exister dans ledit échantillon pour l'observation, l'identification et le diagnostic.

Techniques

Il existe des examens coproparasitoscopiques directs et des techniques de suspension et de concentration des échantillons qui sont utilisées plusieurs fois pour éviter les faux négatifs et observer des échantillons beaucoup plus propres. Certaines techniques de coloration sont également utilisées pour identifier certains parasites.

Examens directs

L'examen direct des selles, en utilisant la technique de la goutte en attente, consiste à diluer l'échantillon de selles avec une solution physiologique (0,9% de NaCl) et à placer une goutte de cette solution dans une concavité dotée d'une lame spéciale utilisée. à cette fin.

Une fois la goutte placée sur la lame, elle est recouverte d'une lamelle et observée au microscope. Cette technique permet d'observer les œufs et les kystes, mais elle permet également d'observer tout élément mobile tel que les flagellés, les larves, les trophozoïtes, les ciliés, etc.

Techniques de suspension et de concentration

Les techniques de suspension utilisent une solution plus dense que les éléments à observer, de sorte que ceux-ci flottent à la surface du liquide et puissent être collectés, puisqu'ils restent concentrés dans la couche superficielle de la solution.

Cette technique présente l'avantage de permettre d'avoir un échantillon de débris assez propre, puisque ceux-ci, étant plus denses, restent au fond de la bouteille. L'inconvénient relatif est que la solution rétrécit et déforme les microorganismes en peu de temps.

Ces méthodes ne sont pas utilisées pour les œufs d'helminthes et de cestodes car ils sont très lourds et ne flottent pas dans ces solutions. Ils sont largement utilisés pour observer les protozoaires sous leur forme tropozoïque ou leurs œufs et pour l'observation de larves, comme celles de Strongyloides stercoralis.

Une autre technique largement utilisée car elle ne déforme pas les microorganismes de l'échantillon et est simple et peu coûteuse est la technique de sédimentation au formol.

Des exemples de techniques de concentration comprennent les techniques de Faust et Richie.

Les différentes techniques permettant la visualisation microscopique des œufs, des larves ou d'autres éléments des différents parasites intestinaux, associées aux techniques de coloration, permettent l'identification et le diagnostic de ces maladies.

Exemples

Ensuite, un cas clinique est décrit et quelques images sont présentées qui illustrent l'utilité de l'examen des selles pour le diagnostic et l'évaluation des bénéfices du traitement.

Œuf de Trichuris trichuria (Source: CDC / Dr Mae Melvin, avec la permission de: Public Health Image Library via Wikimedia Commons)

Un patient de 18 ans se présente au cabinet du médecin pour des coliques, des douleurs abdominales, plus intenses dans la région périombilicale, des nausées et des épisodes de diarrhée aqueuse.

Lors de l'interrogatoire du patient, le médecin a relevé deux points saillants: 1) le patient a déclaré s'être baigné dans un lac dans une zone rurale et 2) il a été frappé par le fait que ses selles flottaient dans les toilettes. Après avoir examiné le patient, le médecin soupçonne la présence de Giardia lamblia.

Cycle de vie de Giardia lamblia (Source: LadyofHats via Wikimedia Commons)

Ce protozoaire est logé dans l'intestin grêle de l'homme et interfère avec l'absorption des graisses, ce qui génère des selles très grasses qui ont tendance à flotter. La pollution provient fréquemment de l'eau polluée des lacs ou des ruisseaux des zones rurales ou de piscines ou de spas mal entretenus.

Giardia lamblia trophozoïtes (Source: Photo d'Eva Nohýnková, Département de médecine tropicale, 1ère Faculté de médecine, Université Charles de Prague et Hôpital Bulovka, République tchèque. Image sur papier par Marie Lipoldova, Laboratoire d'immunologie moléculaire et cellulaire, Institut de molécule Génétique, Académie des sciences de la République tchèque, Prague, République tchèque via Wikimedia Commons)

Le médecin ordonne un examen des selles et les résultats confirment la présence de Giardia lamblia. Après la fin du traitement, un autre examen des selles est indiqué qui confirme l'absence de kystes ou de trophozoïtes de Giardia lamblia.

Références

1. Buonfrate, D., Mena, MA, Angheben, A., Requena-Mendez, A., Muñoz, J., Gobbi, F.,… & COHEMI Project Study Group. (2015). Prévalence de la strongyloïdose en Amérique latine: une revue systématique de la littérature. Épidémiologie et infection, 143 (3), 452-460.
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