BEAUVERIA BASSIANA: CARACTÉRISTIQUES, MORPHOLOGIE, CYCLE DE VIE - LA BIOLOGIE - 2025

Beauveria bassiana est un champignon imparfait appartenant à la famille des Clavicipitaceae, il se reproduit par les conidiospores et est largement utilisé comme entomopathogène. C'est l'agent causal de la maladie de la muscardine blanche, qui parasite une variété de ravageurs qui affectent diverses cultures commerciales.

B. bassiana est d'apparence cotonneuse, de couleur blanche, largement distribuée et située sur le sol, qui est son habitat naturel. En tant qu'agent de lutte biologique, il est très efficace grâce à sa phase saprophyte et pathogène une fois installé dans l'hôte.

Contrôle biologique de Beauveria bassiana. Source: elfram.com

En effet, les conidies de B. bassiana adhèrent à la surface des hôtes, pénètrent, sécrètent des toxines et provoquent la mort. Dans des conditions environnementales favorables, le champignon continue de reproduire des conidies sur des insectes ravageurs pour infecter de nouveaux individus.

Cette espèce s'adapte à différents agroécosystèmes et planchers d'élévation, avec des températures comprises entre 10 et 40 ºC. En effet, une fois l'hôte infesté, selon la phase de l'insecte et le degré de virulence, le ravageur meurt en quatre à six jours.

Les applications de biopesticides tels que B. bassiana sont appréciées pour leur faible effet sur l'environnement et les humains. Cependant, des applications disproportionnées peuvent avoir des conséquences négatives sur les insectes utiles, tels que les pollinisateurs.

Au niveau commercial, le champignon est mélangé avec d'autres ingrédients tels que des poudres, des micro talcs ou des substrats. Dans les formulations liquides, des adjuvants sont ajoutés, afin que les conidies restent viables, qu'elles soient faciles à manipuler et maintiennent une efficacité pathogène élevée.

caractéristiques

Le champignon B. bassiana est l'un des principaux agents pathogènes des ravageurs qui affectent les cultures commerciales. En raison de sa capacité à se développer dans des milieux artificiels et sur divers hôtes, il est classé comme parasite facultatif.

Il est courant de le localiser dans le sol ou dans les restes d'insectes qui ont été colonisés et envahis par le pathogène. Une fois que le champignon a détecté sa proie, il entre par le tégument, la bouche ou l'anus.

Au fur et à mesure que les conidies se développent, par action mécanique et intervention d'enzymes, le tube germinatif pénètre dans l'hôte. Le champignon se développe et envahit l'insecte, se nourrissant de l'hémolymphe et générant des toxines qui détruisent la proie.

Le cycle de vie du champignon dépend des conditions environnementales et des espèces à infecter. Dans des conditions normales, le champignon développe suffisamment de mycélium, de conidiophores et de conidies pour toucher un grand nombre d'individus.

L'espèce Beauveria bassiana est associée à la maladie entomopathogène appelée muscardine blanche, caractérisée en ce que le mycélium du champignon à hyphes cotonneux blancs recouvre complètement la surface de l'hôte.

Il est utilisé dans le contrôle biologique de diverses cultures commerciales, telles que le café, les musacées, les légumes, les crucifères, les fourrages, les fruits, les plantes ornementales et la floriculture. Attaquer les coléoptères nuisibles, les mites, les mouches, les criquets, les pucerons, les punaises de lit, les charançons, les thrips, les larves de lépidoptères, les fourmis, les termites, les cochenilles et les tétranyques.

Taxonomie

Beauveria bassiana, un champignon entomopathogène qui cause la maladie de la muscardine blanche, a été initialement identifié par Balsamo Crivell comme Botritys bassiana (1835). Dans des études ultérieures basées sur la morphologie du champignon, Vuillemin (1912) a déterminé que le genre Beauveria et bassiana était l'espèce.

Des descriptions ultérieures du champignon ont permis d'identifier jusqu'à 14 espèces différentes, dont bassiana, effusa, densa et globulifera (Beauveri, 1914).

En 1954, McLeod a unifié l'espèce en bassiana et tenella, et plus tard Samson et Evans (1993) ont inclus l'amorpha et le velata comme entomopathogènes spécifiques.

Le genre Beauveria est un champignon imparfait appartenant à la famille des Cordycipitacées, de l'ordre des Hypocreales, sous-classe Hypocreomycetidae, classe Sordariomycetes, sous-embranchement Pezizomycotina, embranchement Ascomycota, du royaume Fungi.

Phylogénétiquement B. bassiana est lié au genre Cordyceps. B. bassiana représente la phase asexuée et Cordyceps bassiana la phase sexuelle (Rehner et Buckley, 2005).

Morphologie

Le B. bassiana entomopathogène, classé comme champignon supérieur ou comme champignon imparfait, se reproduit par les conidies. Ces cellules conidiales de forme globuleuse ou sous-globuleuse de 2 à 3 x 2,0 à 2,5 microns ont un col court.

Morphologie de Beauveria bassiana. Source: emlab.com

Les conidies ont une surface lisse et un aspect hyalin, de forme ellipsoïdale globuleuse avec un rachis ondulé. Les conidiophores sont regroupés sous forme compacte constituant les sinèmes d'où proviennent les conidies.

En effet, ces structures apparaissent comme une poudre blanche sur l'hôte lorsqu'elle recouvre complètement la proie. De plus, dans les cultures de laboratoire, il apparaît également sous la forme d'une poudre blanche à la surface, avec une couleur jaunâtre au dos des plaques.

Cycle de vie

L'entomopathogène Beauveria bassiana a une grande capacité d'adaptation pour vivre dans des conditions saprophytes et parasitaires. Cette condition lui permet de vivre librement dans le sol et de rester longtemps à l'abri des invités.

En effet, en tant qu'organisme vivant librement et en présence de matière organique, les conidies génèrent un réseau micellaire filamenteux. Cependant, une fois l'hôte colonisé, les conidies germent en formant un réseau d'hyphes, détruisant l'hôte et formant des blastospores.

Le cycle de vie du champignon Beauveria bassiana sur l'hôte se déroule en quatre phases: adhérence, germination, différenciation et pénétration.

Les phases

Adhérence

L'adhérence se produit lorsque la conidie du champignon entomopathogène adhère à la cuticule de l'insecte hôte. À cet égard, la reconnaissance et la compatibilité entre la membrane conidienne et les cellules épithéliales de la cuticule doivent se produire.

Ce processus est structuré en deux actions: une passive et une active. Dans les forces passives, hydrophobes et électrostatiques interviennent qui facilitent l'adhérence à la surface cuticulaire. Dans les actifs, des substances chimiques interviennent qui favorisent le développement des conidies sur le tégument de l'insecte.

Germination

Une fois établi, le processus enzymatique entre la conidie du champignon et la membrane cuticulaire de l'hôte commence la germination. Ce processus dépend des conditions environnementales: humidité, température et nutriments; et la disponibilité de l'insecte.

Différenciation

Le processus de différenciation commence par la croissance et l'introduction de l'appréhension à travers la membrane cuticulaire. Ce tube germinatif permet l'échange d'enzymes protéases, de lipases, de chitinases et d'estreases du champignon vers l'hôte.

En plus de créer une pression mécanique entre le pathogène et les organismes hôtes. La migration vers l'épiderme et l'hypoderme de l'insecte est accélérée.

Pénétration

Une fois que l'agent pathogène est établi dans le tube digestif de l'insecte, les hyphes qui produisent l'antibiotique oosporine se multiplient. Cette substance agit sur la flore bactérienne de l'hôte, provoquant la mort par toxicité, malnutrition, dommages physiques et momification ultérieure.

Contrôle b

L'entomopathogène Beauveria bassiana a un large potentiel pathogène pour infester divers insectes, générant un taux de mortalité élevé.

Le champignon a la capacité de coloniser des insectes des ordres des coléoptères, des hyménoptères, des homoptères et des lépidoptères, qui sont d'importants ravageurs agricoles.

Mode d'action

Les conidies sont situées à la surface de l'hôte adhérant à la cuticule. Dans des conditions favorables, l'appressorium ou le tube germinatif se développe qui pénètre dans l'hôte, facilitant l'infection du champignon.

Dans le tube digestif de l'insecte, il est dispersé par l'hémolymphe et produit des toxines qui affectent l'activité physiologique de l'hôte. Dans une période de 4 à 6 jours, l'hôte est paralysé et sa destruction ultérieure se produit.

Par la suite, le champignon envahit complètement l'hôte, couvrant toute sa surface avec le mycélium blanc caractéristique. Enfin, cette structure libère de nouvelles conidies infectieuses dans l'environnement afin de contaminer de nouveaux organismes nuisibles.

Application

Les produits formulés à base de Beauveria bassiana sont commercialisés sous forme de suspension en poudre de spores du champignon. Avec ce bioinsecticide, un bouillon de pulvérisation est préparé au niveau foliaire ou dissous dans un substrat à appliquer sur le sol.

Généralement, la formulation d'entomopathogène est obtenue sous forme de poudre sèche (100% de conidies pures). De même, il est disponible dispersé sur des substrats (riz ou argile) à l'état humide ou sec (25 à 40%).

Le mode d'application dépend de l'organisme nuisible à lutter, du développement de la culture et des conditions environnementales. Pour la préparation de la suspension, il est recommandé d'utiliser de l'eau propre, du matériel en bon état, la dose recommandée et appliquer en fin d'après-midi.

Dans le cas de la lutte contre les ravageurs du feuillage, une suspension qui couvre les insectes hôtes doit être appliquée. Pour les ravageurs du sol, il peut être incorporé dans le substrat ou le compost, ou utiliser une suspension qui pénètre jusqu'à atteindre les larves ou les vers.

Lorsqu'il est nécessaire d'attirer l'insecte à parasiter, des pièges avec des appâts imprégnés du champignon sont utilisés pour contaminer l'insecte ravageur. Quelle que soit la méthode de contrôle, il est important de suivre les instructions du fabricant concernant le dosage et le mode d'application.

Parmi la grande variété de ravageurs contrôlés par le champignon Beauveria bassiana, on peut citer:

• Charançon de la canne (Metamasius hemipterus)
• Teigne du chou (Plutella xyloatella)
• Coccinelle Solanaceae (Leptinotarsa ​​decemlineata)
• Foreur géant (Castnia licus)
• Papillon (Cydia pomonella)
• Homard volant (Schistocerca piceifrons)
• Poule aveugle (Phyllophaga spp)
• Légionnaire d'automne (Spodoptera frugiperda)
• Faux mètre (Mocis latipes)
• Charançon du piment (Anthonomus grandis)
• Charançon noir chez les musacées (Cosmopolites sordidus)
• Pyrale du café (Hypothenemus hampei)
• Charançon du palmier (Rhynchophorus palmarum)
• Pyrale du maïs (Ostrinia Furnacalis)
• Foreur des tiges (Diatraea saccharalis)
• Chapulín (Brachystola magna)

Contrôle biologique du CBB

Le foreur du café (Hypothenemus hampei) est le principal ravageur des grains de café dans la plupart des plantations commerciales. L'entomopathogène B. bassiana est actuellement le principal ennemi naturel de ce petit coléoptère.

Pyrale du café (Hypothenemus hampei). Source: Wikimedia Commons

Le semoir pénètre dans le grain de café, le perfore et diminue la productivité des plantations et la qualité du grain. Une fois le ravageur installé dans la plantation, il se reproduit de manière exponentielle, atteignant jusqu'à huit générations en un an.

Pour un contrôle efficace du ravageur, il est nécessaire d'utiliser des souches virulentes et de faire des applications lorsque des insectes volants sont observés. À cet égard, le champignon ne peut pas attaquer l'insecte à l'intérieur du grain, car les conidies ne peuvent pas pénétrer à l'intérieur du fruit.

En effet, il est nécessaire que les conidies adhèrent au corps du CBB, pour qu'elles poussent et pénètrent dans le tégument de l'insecte. Puis la reproduction du mycélium commence, le champignon se nourrit de l'hôte, génère des toxines qui l'affaiblissent et finalement l'élimine.

Des études sur le terrain ont montré que l'efficacité des applications avec B. bassiana rapporte de meilleurs résultats en attaquant les foyers d'attaque. Il est recommandé de pulvériser les branches productives et la plaque d'arbre.

Contrôle biologique des fourmis coupeuses

Les fourmis coupeuses, appartenant aux genres Atta et Acromyrmex, sont les agents responsables des dommages dans les productions horticoles, fruitières et forestières. Actuellement, l'application d'appâts imprégnés de pesticides chimiques dans ou autour des fourmilières est courante.

Fourmi coupeuse d'Acromyrmex. Source: Wikimedia Commons

Le principal dommage causé par les fourmis coupeuses est la défoliation de la plante, réduisant le rendement et générant des pertes économiques. L'utilisation de produits chimiques produit une pollution environnementale élevée, de sorte que l'utilisation de B. bassiana constitue une alternative viable.

Les applications avec des spores de l'entomopathogène sont effectuées directement sur les fourmis qui circulent autour des plantations affectées. De même, on utilise des appâts imprégnés que les ouvrières emporteront à l'intérieur de la fourmilière pour que le champignon se reproduise.

Lorsque les conidies adhèrent aux fourmis, elles se développent et produisent des toxines qui tuent le ravageur. De la même manière, B. Bassiana attaque la source de nourriture des fourmis, le champignon Attamyces sp., Remplissant deux types de contrôle.

Contrôle biologique des céréales stockées

La protection et la conservation des céréales stockées sont essentielles pour maintenir le contrôle post-récolte des différentes cultures, en particulier les céréales et les légumineuses.

Le charançon du maïs (Sitophilus zeamais) est un ravageur de grande valeur commerciale des grains de maïs stockés dans des silos et des greniers.

Charançon du maïs (Sitophilus zeamais). Source: ozanimals.com

Des travaux de recherche ont montré que B. bassiana appliqué sous différentes formes et dosages a permis de contrôler ce ravageur à 100%. Les applications de granulés rapportent d'excellents résultats sept jours après le contact du ravageur avec l'entomopathogène.

Le charançon du maïs (S. zeamais) est très sensible lorsqu'il est exposé à des concentrations élevées de l'entomopathogène B. bassiana. Des études suggèrent que l'utilisation de ces micro-organismes est une alternative pour la gestion intégrale des ravageurs dans les céréales stockées.

Références

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